Rappoporti, Endo, Levini, Russelli, Kligleri toitainekeskkond: söötme tüüp, koostis, eesmärk, toimepõhimõte. Rappoporti, Endo, Levini, Russelli, Kligleri toitekeskkond: söötme tüüp, koostis, eesmärk, toimepõhimõte Levini toitekeskkond

Levina-GRM Obolensk Eosiin-metüleensinisega toitekeskkond patogeensete ja tinglikult patogeensete enterobakterite eraldamiseks ja eristamiseks, samuti stafülokokkide eraldamiseks, kuiv.

Pakendi hind 0,25 kg

JUHEND eosiin-metüleensinise kuivaga toitesöötme kasutamiseks - Levin Medium-GRM Obolensk

Levin-GRM Obolensk sööde on ette nähtud sanitaar- ja kliinilise mikrobioloogia bakterioloogilisteks uuringuteks patogeensete ja tinglikult patogeensete enterobakterite isoleerimiseks ja eristamiseks, samuti stafülokokkide isoleerimiseks.

Levin-GRM Obolensk medium on peen, hügroskoopne, valgustundlik helelilla värvusega pulber.

Saadaval 250 g polüetüleenist purkides.

2.1. TÖÖPÕHIMÕTE

Eosiini ja metüleensinise olemasolu söötmes annab sellele selektiivsed omadused.

Söötme eristumisvõime põhineb söötme pH muutustel bakterite poolt laktoosi kääritamisel tekkiva happe mõjul. Happelise tsooni indikaatorite kompleks värvib hapet moodustavate bakterite kolooniad tumelillaks, mõnel koloonial on rohekas metalliline läige.

2.2. ÜHEND

Levin-GRM Obolenski sööde on kuivade komponentide segu kiirusega, g/l:

Levin-GRM sööde peaks tagama testitavate tüvede Shigella flexneri 1a 8516 ja Escherichia coli 168/59 (O111:K58) kasvu kõigil külvatud Petri tassidel pärast 18-20 tundi inkubeerimist temperatuuril (37±1) °C. inokuleerimisel 0,1 ml iga uuritava tüve kultuuri mikroobisuspensiooni lahjendusest 10–7 ja testitava tüve Staphylococcus aureus 209-P (ATCC 6538-P) kasvu pärast 48-tunnist inkubeerimist temperatuuril (37±1) °C, kui inokuleeritakse 0,1 ml uuritava tüve kultuuri mikroobisuspensiooni lahjendusest 10–5.

Keskkonna eristavad omadused. Toitekeskkond peab tagama Shigella selge eristumise Escherichiast kõikidel inokuleeritud tassidel, kui külvata 0,1 ml S. flexneri 1a 8516 ja E. coli 168/59 (O111:K58) mikroobset segu lahjendusest 10–6 (in) suhtega 1:1) pärast 18-20-tunnist inkubeerimist temperatuuril (37±1) °C.

Võimalik oht toitekeskkonna kasutamisel vastavalt määrusele
Vene Föderatsiooni tervishoiuministeerium nr 4n, 6. juuni 2012 - klass 2 a.

• Termostaat, mis tagab temperatuuri 37±1 °C
• Laboratoorsed kaalud 2 täpsusklassi
• Autoklaav
• Klaasist katseklaasid
• Klaaspipetid, mis võimaldavad välja tõmmata 1 ja 2 ml vedelikku
• Klaasist mõõtesilinder mahuga 1000 ml
• Petri tassid steriilsed
• Destilleeritud vesi
• Kolvid
• Klaaslehtrid

Kliinilise laboridiagnostika uurimisobjektid (veri, sapp, uriin, mäda jne).

Uuringu viivad läbi meditsiinispetsialistid bakterioloogilises laboris.

7.1. Levin-GRM Obolenski söötme valmistamine.

Pulber konkreetse seeria toitainekeskkonna valmistamiseks etiketil näidatud koguses segatakse 1 liitris destilleeritud vees, keedetakse 3 minutit, filtreeritakse läbi puuvillase marlifiltri ja steriliseeritakse autoklaaviga temperatuuril 110 ° C. 20 minutiks. Steriilne keskkond jahutatakse temperatuurini
45-50 °C, valada 5-6 mm kihina steriilsetesse Petri tassidesse. Pärast söötme tahkumist kuivatatakse tasse temperatuuril (37±1)°C 40-60 minutit. Petri tassides valmistatud sööde on läbipaistev, helelillast kuni punakaspruunini.

Steriilset söödet võib kasutada 3 päeva, kui seda hoitakse temperatuuril 2–8 C.

7.2. Nakatunud materjali võtmine, nakatamine ja tulemuste registreerimine toimub vastavalt “Enterobakterite põhjustatud haiguste mikrobioloogilise diagnoosimise juhendile” (M., 1984) ja NSVL Tervishoiuministeeriumi 22. aprilli 1985. a korraldusele nr. 535 “Meditsiiniasutuste kliinilistes diagnostikalaborites kasutatavate mikrobioloogiliste (bakterioloogiliste) uurimismeetodite ühtlustamise kohta”.

7.3. Uuritavat materjali hõõrutakse steriilse spaatliga ettevaatlikult üle kogu söötme pinna. Inkubeerida temperatuuril (37±1) °C 46–48 tundi.

Pärast 18-20-tunnist inkubeerimist temperatuuril (37±1) °C on kultuuride S. flexneri 1a 8516 ja E.coli 168/59 (O111:K58) kasvumuster ning 46-48 tunni pärast kasvamine. S.aureus 209 kultuuri mustrit võetakse visuaalselt arvesse -P (ATCC 6538-P).

S.flexneri 1a 8516 kolooniad peaksid olema ümmargused, läbipaistvad, värvitud või kergelt roosad, läbimõõduga 1,0–1,5 mm.

E. coli 168/59 (O111:K58) kolooniad peaksid olema ümmargused, tumelillad, rohelise metallilise läikega (võib esineda üksikuid kolooniaid ilma metallilise läikega), läbimõõduga 1,5-2,0 mm.

S. aureus 209-P (ATCC 6538-P) kolooniad peaksid olema ümmargused, värvitud või helelillad, tumeda keskpunktiga, läbimõõduga kuni 1,0 mm.

Aegunud säilivusajaga Levina-GRM Obolenski söötme seeria kõrvaldamine toimub vastavalt
SanPiN 2.1.7.2790-10 meditsiinijäätmetena, mis kuuluvad klassi “A” - epidemioloogiliselt ohutud jäätmed.

Levin-GRM keskkonna hävitamine pärast bioloogilist tõrjet viiakse läbi vastavalt SanPiN 2.1.7.2790-10 klassi "B" kuuluvate meditsiinijäätmetena koos kohustusliku eelneva neutraliseerimisega autoklaavimisel 2 tunni jooksul temperatuuril (133±1) ˚ C.

Meditsiinijäätmete töötlemine peaks toimuma vastavalt skeemile, mis on vastu võetud konkreetses meditsiini- ja (või) farmaatsiategevust teostavas organisatsioonis. See skeem on välja töötatud vastavalt ülaltoodud sanitaareeskirjade nõuetele ja selle on heaks kiitnud organisatsiooni juht.

** Koostis on kontrollitud ja kohandatud, et see vastaks nõutavatele parameetritele

Segage 37,5 g pulbrit M022 või 27,5 g pulbrit M301 1000 ml destilleeritud vees. Keeda, et osakesed täielikult lahustuksid. Enne steriliseerimist lisage Levin Agar Base'ile (M301) sobiv süsivesik. Steriliseerige autoklaavides 1,1 atm (121 °C) juures 15 minutit. ÄRGE KESKKONDA ÜLEKUJENDAGE. Jahutage temperatuurini 50 °C ja loksutage metüleensinise oksüdeerimiseks (sinise värvuse taastamiseks ja helbelise sademe segamiseks). Kui söödet kasutatakse samal päeval, ei pea seda autoklaavima.

Hoiatus: Söödet tuleb hoida pimedas, et vältida selle valguse käes oksüdeerumist.

Selle raamistiku töötas välja Levine (1, 2) ja seda kasutatakse eristamiseks Escherichia coli Ja Enterobacter aerogenes, samuti seente kiireks tuvastamiseks Candida albicans. Ameerika eksperdid soovitavad seda söödet soolestiku (kolibakterite) rühma gramnegatiivsete mikroorganismide eraldamiseks, loendamiseks ja eristamiseks (3, 4, 5).

Metüleensinine ja eosiin pärsivad teatud määral grampositiivsete mikroorganismide kasvu. Need värvained toimivad laktoosi fermentatsiooni eristavate näitajatena. Pärm ja mõned grampositiivsed bakterid, nagu enterokokid, võivad sellel söötmel täpsete kolooniatena kasvada. Weld (6, 7) tegi ettepaneku kasutada seente kiireks tuvastamiseks Levine agarit, millele on lisatud kloortetratsükliinvesinikkloriidi. Candida albicans kliinilises materjalis. Nende seente tuvastamine sellistes materjalides nagu väljaheited, suu- ja tupesekretid, küüned, nahahelbed ja muud on võimalik pärast 24-48-tunnist inkubeerimist temperatuuril 35-37 °C 10% süsinikdioksiidi sisaldavas atmosfääris. Seente kultuurilised omadused on aga erinevad.

Homogeenne vabalt voolav helelilla pulber.

Moodustatakse sööde, mille tihedus vastab 1,5% agargeelile.

Valmistatud sööde on punakaslilla värvusega, roheka varjundiga opalestseeruv ja Petri tassidesse geeli moodustumise korral esineb kerget sadet.

Temperatuuril 25 °C on M022 vesilahuse (3,75% w/v) pH 7,1 ± 0,2, M301 vesilahuse (2,75% w/v) pH on 7,3 ± 0,2.

Võrdlustüvede kasvuomadused pärast 24-48 tundi temperatuuril 35-37°C.

LEVINE WEDNESDAY (M. Levine, Ameerika bakterioloog, sünd. 1889; sün. eosiin metüleensinine agar) - värviline selektiivne toitekeskkond perekonna bakterite eristamiseks. Enterobacteriaceae kasutatakse düsenteeria, kõhutüüfuse, salmonelloosi ja teiste sooleinfektsioonide laboratoorseks diagnoosimiseks. Eosiini ja metüleensinise agari pakkusid esmakordselt välja 1916. aastal J. E. Holt-Harris ja O. Teague, hiljem, 1918. aastal, muutis Lewin söötme koostist.

L.S. koos teiste tahkevärviliste enterobakterite diferentsiaaldiagnostika toitainete söötmetega on leidnud laialdast kasutamist laboris. harjutada. Tema abiga on suhteliselt suurel protsendil juhtudest võimalik tuvastada patogeenset laktoosnegatiivset mikrofloorat. Valmis HP üsna stabiilne, ei muuda oma omadusi valguse käes ega mitme päeva jooksul säilitamisel; selle valmistamine ei nõua vesinikioonide kontsentratsiooni (pH) täpset määramist. Sisaldub HP koostisesse. orgaanilised värvained pärsivad selektiivselt grampositiivsete bakterite kasvu, tänu millele on see ühtaegu nii rikastussöötmeks kui ka annab suhteliselt paremaid tulemusi uuritava materjali otsesel nakatamisel, isegi kui see sisaldab suhteliselt vähe patogeenseid baktereid.

Sõltuvalt üksikute koostisosade (peptoon ja eriti värvained) kvaliteedist saadud HP. tulemused võivad mõnevõrra erineda, seetõttu on iga uue kandja seeria ettevalmistamisel soovitatav kasutada sama kaubamärgi materjale, mis hõlbustab oluliselt kolooniate äratundmist.

HP valmistamiseks on teada mitmeid retsepte ja meetodeid. (Yu. A. Kozlov, G. Ya. Sinai, O. G. Birger jt). Enim kasutatav on meetod, mille puhul põhisööde, laktoosi ja värvainete lahused valmistatakse eraldi, sobivad edaspidiseks kasutamiseks säilitamiseks ja segatakse enne kasutamist.

Põhisööde koosneb 10 g bakterioloogilisest peptoonist, 15 g agar-agarist, 2 g kaaliumfosfaadist (K2HPO4) ja 1 liitrist destilleeritud veest. Seda steriliseeritakse autoklaavis 1 atm juures 15-20 minutit, pH-d ei reguleerita.

Diferentsiaalsöötme valmistamisel lisage iga 100 ml sulatatud aluselise söötme kohta pidevalt segades järgmised lahused, mis on valmistatud destilleeritud vees ja eelnevalt steriliseeritud voolava auruga (fraktsionaalselt, 3 päeva järjest, igaüks 15-20 minutit) antud järjestus 5 ml 20% meditsiinilise laktoosi lahust, 2 ml 2% aluselist eosiini lahust (bakterioloogiline), 1,5 ml 0,5% metüleensinise lahust. Valmistatud sööde valatakse Petri tassidesse, kuivatatakse veidi ja kasutatakse nagu tavaliselt. Söötme värvus on sinakasvioletne.

Escherichia coli kolooniad L. p. väike, ümmargune, sileda läikiva pinnaga, tumesinist (kuni musta) värvi, mõnikord metallilise läikega. Noored kolooniad on hägused, läbipaistmatud ja neid saab värvida ainult keskel. Düsenteeria, kõhutüüfuse ja paratüüfuse patogeenide kolooniad on suhteliselt väiksemad, ümarad, läikivad ja läbipaistvad, tavaliselt täiesti värvitud (noored) või kergelt roosaka või sinaka varjundiga. Protea kolooniad ei tekita roomavat kasvu; need on väikesed, isoleeritud ja oranžikaskollase värvusega. Sööde muudab värvi ainult Protea kolooniate ümbruses.

Mõned autorid soovitavad suurendada 0,5% metüleensinise lahuse kogust 2 ml-ni 100 ml põhisöötme kohta või kõrvaldada selle koostisest fosfaatpuhver. Söötme saab valmistada mitte peptooniga, vaid Hottingeri seedimise põhjal pH 7,2-7,3 juures, lisades sobiva koguse agarit ja kaaliumfosfaati. Lihavee kasutamine söötme valmistamiseks on lubamatu, kolooniate eristumine on sel juhul oluliselt halvem.

Kuiva HP valmistamiseks on teada meetod, mis on kvaliteedilt väga stabiilne ja eriti mugav pikaajaliseks ladustamiseks ja ekspeditsioonitöö tingimustes (N.V. Ploskirev).

Stabiilne kuiv HP. on toodetud tööstuses, koos kandjaga saadetakse selle valmistamise ja kasutamise juhised. Enamikus diagnostikalaborites kasutatakse patogeensete enterobakterite – L. s., Bacto-agar F, Ploskirevi sööde – isoleerimiseks ja diferentseerimiseks kvaliteetseid standardseid kodumaise toodangu selektiivseid kuivtoitesöötmeid (vt Ploskirevi sööde).

Bibliograafia: Nakkushaiguste mikrobioloogilise diagnoosimise juhend, toim. K. I. Matveeva, lk. 110, M., 1973; Mikrobioloogiliste ja viroloogiliste uurimismeetodite käsiraamat, toim. M. O. Birger, lk. 58, M., 1973; Levine M. Värvide kontsentratsiooni mõju enterobakterite diferentseerumisele eosiin-metüleen-sini-agaril, J. Bact., v. 45, lk. 471, 1943.

G. P. Belikov.

Harjuta

Tihe meedia

Vismuti sulfiitagar

______________________________________________

Paratüüfus A salmonelloos

Valmistatud sööde on läbipaistmatu ja herneroheline. Rangelt selektiivne sööde Salmonella puhaste kultuuride eraldamiseks. Salmonella typhi, Salmonella enteritidis Ja Salmonella typhimurium Tavaliselt moodustuvad sellel keskmisel metallilise läikega mustad kolooniad, mida ümbritseb vesiniksulfiidi tootmise ja sulfiti redutseerimise tulemusena musta värvi raudsulfiidiks tumenemistsoon. Salmonella paratyphi A moodustab helerohelisi kolooniaid.

Vastuse näidis: Väikesed kolooniad leiti tahkel söötmel “Bismuth-sulfite agar”. Ühtlase servaga sile, tume ja läbipaistmatu metallilise läikega.

______________________________________________

Kolmapäev Levin

Vastuse näidis: Sellel söötmel leiti Levini söötme väikesed siledad kolooniad sini-violetse värvi sileda servaga ja metallilise läikega, laktoosi kääritamisel happeks. Indikaator on metüleensinine. Esialgne diagnoos - Escherichia coli põhjustatud kolenteriit - Escherichia coli.

Vastuse näidis: See sööde on Levini sööde, mis on valmistatud isoleeritud kolooniate saamiseks. Söötmel leiti väikesed, siledad, läbipaistvad, värvimata kolooniad ja laktoosi fermentatsioon puudus. Eeldiagnoos – võimalike patogeenide põhjustatud düsenteeria:

Serorühm A: Shigella düsenteeria(10 serovari)

Serorühm B: S. flexneri(6 serovari ja alatüüpi)

Serorühm C: S. boydii(15 serovari)

Serorühm D: S. sonnei(1 serovar)

______________________________________________

Endo keskkond

______________________________________________

Vastuse näidis: See meedium on Endo meedium. Sellelt leiti väikesed, värvitud, läbipaistvad, sileda servaga siledad kolooniad. Laktoosi lagunemine happeks ei toimu, nagu näitab söötme värvus. Kasutatakse Andrade indikaatorit. Eeldatav diagnoos on kõhutüüfus, mille põhjustas Salmonella Typhi.

Vastuse näidis: Seda söödet kasutatakse isoleeritud kolooniate kogumiseks. Kolmapäev – Endo. Leiti väike, sile sileda servaga, punane metallilise läikega laktoosi lagunemise tõttu happeks Andrade indikaatori abil. Esialgne diagnoos - Escherichia coli põhjustatud kolenteriit - Escherichia coli.

______________________________________________

Antibiootikumide suhtes tundlikkuse määramise meetodid

______________________________________________

Vastuse näidis: Petri tass tutvustab antibiootikumitundlikkuse määramise meetodit - paberketta meetodit, mille käigus kantakse Petri tassis oleva agari pinnale bakterisuspensioon ja seejärel asetatakse teatud koguses antibiootikumi sisaldavad kettad. Antibiootikumi difusioon agarisse viib ketaste ümber mikroorganismide kasvu pärssiva tsooni moodustumiseni. Pärast roogade üleöö inkubeerimist termostaadis temperatuuril 35 o -37 o C võetakse tulemus arvesse ketta ümber oleva tsooni läbimõõdu mõõtmisel millimeetrites.

Eraldatud kultuur on väga tundlik monomütsiini suhtes, läbimõõt kasvupeetuse suhtes on 30 mm, neomütsiini - 26 mm, kanamütsiini - 20 mm ja klooramfenikooli pole üldse. E. coli-le iseloomulik - Escherichia coli.

______________________________________________

Õhust külvamine

______________________________________________

Vastuse näidis: See plaatagar inokuleeriti õhust, kasutades settimismeetodit. Siseõhu saastatuse näitaja on bakterite koguarv 1 kuupmeetri kohta. Bakterite arv määratakse 10 minutiga. Selleks jäetakse plaadiga MPA Petri tass 10 minutiks õhku avatuna, seejärel inkubeeritakse termostaadis temperatuuril 37 kraadi 24 tundi. Tulemused arvutatakse kolooniate koguarvu järgi. Operatsiooniruumi norm enne operatsiooni on 3-5 kolooniat. Pärast – 15. On olemas ka aspiratsioonimeetod, kus õhku hinnatakse spetsiaalse Krotovy aparaadiga.

______________________________________________

Mikroorganismide segu

______________________________________________

Värvivalik

______________________________________________

Düsenteeria

______________________________________________

MPB (proteolüütiliste omaduste määramiseks): H2S-; indool-;

Mannitool: Acid+; Gaas-;

Maltoos: Acid+; Gaas-;

Peškovi sööde: kasv torke järgi, värvus on muutunud punaseks, mis viitab mannitooli käärimisele happeks. Indikaator – Andrade;

______________________________________________

Escherichia coli

______________________________________________

MPB (proteolüütiliste omaduste määramiseks): H2S+ (mustaks); Indool+(punaseks);

Glükoos: Acid+; Gaas+;

Laktoos: Acid+; Gaas+;

Maltoos: Acid+; Gaas+;

sahharoos: hape-; Gaas-;

Peškovi sööde: kogu kolonni hägusus (kultuur on liikuv), värvus on muutunud punaseks, mis näitab mannitooli kääritamist happeks ja gaasimullide olemasolu. Indikaator – Andrade;

Resseli sööde (indikaator - bromotümoolsinine): kaldnurk ja sammas on kollased ning paksuses on gaas, mis näitab laktoosi ja fruktoosi lagunemist gaasiks ja happeks.

Kõhutüüfus

______________________________________________

Sisemine sööde (indikaator – vesi-rosool):

Glükoos: Acid+; Gaas-;

Maltoos: Acid+; Gaas-;

Mannitool: Acid+; Gaas-;

Laktoos: Happe-; Gaas-;

sahharoos: hape-; Gaas-;

Peškovi sööde: kogu kolonni hägusus (kultuur on liikuv), värvus on muutunud punaseks, mis näitab mannitooli kääritamist happeks. Gaasi ei ole. Indikaator – Andrade;

______________________________________________

Salmonelloos

______________________________________________

MPB (proteolüütiliste omaduste määramiseks): H2S+ (mustaks); indool-;

Sisemine sööde (indikaator – vesi-rosool):

Maltoos: Acid+; Gaas-;

sahharoos: hape-; Gaas-;

Peškovi sööde: kogu kolonni hägusus (kultuur on liikuv), värvus on muutunud punaseks, mis näitab mannitooli kääritamist happeks ja gaasiks. Indikaator – Andrade;

Resseli sööde (indikaator – bromotümoolsinine): nõlval on muutumatu värvus ja veerg on kollane. Paksuses on gaas, mis näitab fruktoosi lagunemist gaasiks ja happeks, laktoos on kääritamata.

______________________________________________

Gaasi gangreen

______________________________________________

Kitta-Tarozzi sööde: vedel sööde anaeroobide kasvatamiseks. Selle valmistamiseks valatakse väikesteks tükkideks lõigatud maks (liha) kolmekordse koguse MPB-ga, keedetakse 30 minutit ja filtreeritakse. Kuivatatud maksatükid asetatakse (hapniku adsorptsiooniks) katseklaasidesse ja täidetakse puljongiga. Steriliseerige 120°C juures 30 minutit. Enne kasutamist soojendage ja täitke steriilse neutraalse parafiinõliga.

Sellel söötmel tuvastati kasv hägususe kujul. Toimub ka gaasi moodustumine.

______________________________________________

Botulism

______________________________________________

Weinbergi sööde: patogeensete anaeroobide kasvatamiseks kasutatav poolvedel toitekeskkond, milleks on liha-peptoonpuljong, mis sisaldab 1% agarit ja 0,2% glükoosi;

Suhkruagari kolonnist leiti väikesed kettakujulised kohevad kolooniad. Sööde puruneb glükoosi kääritamise ajal suurenenud gaasitootmise tõttu.

Nad teevad lõike. Võtke Pasteuri pipeti või nõela abil osa kolooniatest ja asetage need kogunemiseks Kitta-Tarozzi söötmesse.

______________________________________________

Aglutinatsioonireaktsioon (laiendatud)

______________________________________________

NB!: Sõbrad, ärge unustage, et peate lugema reaktsioone lõpust – kontrollides seerumit ja antigeeni kontrolli. Pärast seda küsitakse tõenäoliselt definitsiooni aglutineeriv seerumi tiiter (seerumi maksimaalne lahjendus, mille juures toimub aglutinatsioon vastava mikroorganismiga) Ja diagnostiline seerumi tiiter (spetsiifilise patogeeni antikehade tiiter vereseerumis, mis on tuvastatud patsientidel ja mida ei täheldatud tervetel inimestel).

Vastuse näidis: See reaktsioon on üksikasjalik aglutinatsioonireaktsioon. Seerumi kontroll näib olevat selge vedelikuna ja on negatiivne. Antigeenikontroll näitab hägusust, ka negatiivset. Vaatleme lahjendust 1/100 - läbipaistev vihmavarjuga põhjas, raputamisel - helbed, mis tähendab, et reaktsioon on positiivne. Ja nii edasi kuni 1/6400. Vaatame lahjendust 1/12800, seal on märgatav hägusus - reaktsioon on negatiivne.

Järelikult on aglutinatsioonireaktsioon positiivne kuni lahjenduseni 1/6400 negatiivse kontrolliga, mis tähendab, et testitava seerumi tiiter on 1/6400.

Aglutinatsioonireaktsioon on kehakeste (bakterid, punased verelibled jne) liimimine antikehadega elektrolüütide – naatriumkloriidi – juuresolekul.

______________________________________________

Komplimendi sidumisreaktsioon

______________________________________________

RSC põhineb komplemendi aktiveerimisel antigeen-antikeha kompleksi poolt.

See toimub kahes etapis:

Segu inkubeerimine: antigeen+antikeha+komplement

Indikaator: ühe komplemendi tuvastamine hemolüütilise süsteemi lisamisega (lamba punased verelibled + hemolüütiline seerum kolmekordses tiitris)

Vastuse näidis: CSC-d registreeriti patsientide 1 ja 2 seerumitega, et tuvastada neis olevad vastava antigeeni vastased antikehad. Reaktsioon patsiendi 2 seerumiga on negatiivne, kuna esimeses etapis ei vastanud antikeha ja antigeen üksteisele ega seostunud, mis tähendab, et nad ei seostunud komplemendiga. Seejärel ühineb vaba komplement hemolüütilise süsteemiga ja toimub lüüs. Patsiendi 1 seerumis tuvastati viivitatud hemolüüs, mis tähendab, et on tekkinud kompleks “antikeha+antigeen+komplement”. Komplement on seotud ja ei seondu hemolüütilise süsteemiga. Hemolüüs puudub. Diagnoos on positiivne.

______________________________________________

Passiivne (kaudne) hemaglutinatsiooni reaktsioon

______________________________________________

RNGA-s tuvastatakse vereseerumi antikehad antigeense erütrotsüütide diagnostika abil, milleks on erütrotsüüdid, millele on adsorbeerunud antigeenid.

RPHA asetatakse plasttablettidesse või katseklaasidesse patsiendi vereseerumi lahjendustega, millele lisatakse erütrotsüütide diagnostika.

Punased verelibled (või lateksiosakesed), millele on adsorbeerunud antigeenid, interakteeruvad vereseerumis olevate vastavate antikehadega, mis põhjustab punaste vereliblede kokkukleepumist ja kukub kammkarbi kujul katseklaasi või raku põhja. sete. Negatiivse reaktsiooni korral settivad punased verelibled nupu kujul.

Hind: 2 970,00 RUB

Saate lisada kauba ostukorvi täpsustades koguse

Tootja: Obolensk

Riik Venemaa

Üksus ühik: kg

Pakendi tüüp: polüetüleenpurk

Artikkel: O9

Kirjeldus

Levin-GRM toitekeskkond eosiinmetüleensinisega patogeensete ja tinglikult patogeensete enterobakterite eraldamiseks uuritavast materjalist, nende eristamine laktoosi kääritamise alusel. Söötmel võib eraldada ka koagulaaspositiivseid stafülokokke. Eosiin ja metüleensinine annavad selektiivsed omadused. Kuivpulbri kujul piisab 250 g pakendist 6,6 liitri tiheda agarsöötme valmistamiseks

Diferentsiaaldiagnostiline selektiivne sööde, tööpõhimõte põhineb mõnede bakterite võimel kääritada laktoosi koos toodete moodustumisega, mis nihutavad pH-d happelisele poolele ja selle tulemusena muutub indikaatorite kompleksi värvus, mis värvi hapet moodustavate bakterite kolooniad tumelilla värviga. Kasvatamise tulemusena saadakse selge diferentseerumine isoleeritud üksikute kolooniate kujul: laktoosnegatiivsed moodustavad läbipaistvad või poolläbipaistvad värvitud kolooniad, millel on võimalik kerge pigmentatsioon, näiteks Staphylococcus aureus, Shigella flexneri. Laktoosipositiivsed enterobakterid toodavad läbipaistmatuid helelillast kuni violetse värvusega roheka metallilise läikega või ilma, eriti E. coli puhul

Söötme koostis: kalajahu pankrease hüdrolüsaat, pärmiekstrakt, laktoos, dinaatriumfosfaat, naatriumkloriid, eosiin-H, metüleensinine, agar.
Homogeense kuiva, kergesti lahustuva helelilla värvi pulbri kujul.
Valmistatud sööde on läbipaistev, helelillast kuni punakaspruunini.
Söötme happesus: 25°C juures on selle pH 7,2 ± 0,2.
Valmistatud söödet võib kasutada esimese kolme päeva jooksul säilitustemperatuuril +2...8°C pimedas kohas.
Väljastusvorm: kuivpulber 250 g polüetüleenpurkides.
Säilitamistingimused: hermeetiliselt suletud pakendis kuivas valguse eest kaitstud kohas temperatuuril +2...30°C.
Kõlblikkusaeg - 2 aastat alates pakendil märgitud tootmiskuupäevast.
Registreerimistunnistus nr FSR 2008/03063